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Les bétalactamases à spectre élargi/étendu, donnent des images très classiques de bouchon de champagne entre les disques de type Céphalosporine de 3e génération et un disque contenant de l'acide clavulanique. Il n'est pas facile d'expliquer de telles images…

Voici une proposition pour tenter de comprendre :

 
En haut, pour E. coli (merci à Mélanie Dufaux pour l'image), les zones où les cercles se rejoignent représentent en violet la zone où l'acide clavulanique est efficace. Ces cercles ont le même diamètre… montrant donc que l'acide clavulanique agit à la même concentration. Le positionnement pour le disque de CTX (entouré d'orange) est le même par rapport aux autres disques.
En bas, le cercle rouge montre là aussi l'acide clavulanique. Le croisement des disques violet et rouge montre aussi l'action conjointe des deux molécules.
On peut donc penser que c'est bien l'acide clavulanique qui est en cause et déclenche la synergie : il inhibe la BLSE permettant, dans la zone d'intersection, l'action de l'autre antibiotique (la C3G).
 
 
À vos critiques…

 

 

Faut-il avoir peur des spores de champignons ?

Depuis de nombreuses années, on entend parler des spores d’Aspergillus qui forment des aérosols massifs quand on les manipule au laboratoire et qui provoquent des maladies gravissimes chez les élèves. De toutes parts arrive la recommandation d'utiliser un PSM pour manipuler des moisissures banales comme Aspergillus. C'est le cas aux examens (bac), à l'INRS. Et voilà qu’il faut les manipuler sous PSM avec un scaphandre…
Il me semble pourtant que la première action à faire avant de prendre des mesures contraignantes, coûteuses et stupides est l'analyse de risques.

Première observation :combien de malades dans les laboratoires (d'établissements scolaires) ?
La réponse est très claire : AUCUN (officiellement). Le seul cas suspect rencontré chez un collègue il y a de nombreuses années en Normandie s’avère faux. Regardons les aspergilloses en France : on ne les trouve que dans les services d’immunodéprimés, et tout particulièrement les leucémiques et les greffés de moelle. Peut-être existe-t-il encore quelques cas chez des paysans ayant respiré des quantités massives de spores dans des silos que les moisissures ont envahi. Comment les malades ont-ils été atteints ? Il a fallu que des spores les contaminent : elles proviennent souvent de travaux voisins sur des bâtiments. Constatons que ce sont les seuls atteints car les ouvriers, plus exposés, ne sont pas tombés malades. Nous avons donc une excellente immunité contre les Aspergillus.

Deuxième observation : les contaminations des boîtes de bactériologie ou de culture cellulaire au lycée.
Au lycée Paul Éluard, nous manipulons champignons, cellules et bactéries dans le même laboratoire, nous cultivons les cellules sans antifongiques, et bien évidemment le labo est occupé au moins 30 à 40 h par semaine… Et pourtant les contaminations fongiques sont rares…

Ajoutons même que nous avons isolé un A. fumigatus du bac à eau de l’étuve à CO2 alors que nous ne l’avions pas dans le souchier… donc qu’il provenait de l’environnement et qu’il fallait mettre un antifongique dans le bac à eau (ou renouveler souvent cette eau) (voir Champignons dans étuve à CO2). De plus, des champignons comme les Aspergillus cultivent très rapidement (en 24 h) et à 37°C…

Enfin, une technicienne de mycologie à l'hôpital Avicenne (Bobigny) m'a gentiment fait remarquer que les champignons des différents tubes placés dans l'étuve ne passent pas de tubes en tubes !

Troisième observation :
quand on fait du camembert, les ouvriers pulvérisent Penicillium camembertii sous forme d’aérosol, sans masque ni autre protection (au moins dans la laiterie visitée)… Bien sûr cette moisissure n'est pas pathogène…

Quatrième observation :
les champignons ne sautent pas d’un tube à l’autre dans le souchier tenu normalement. Il est facile de le constater en regardant les tubes…


Il me semble donc qu'imposer la manipulation sous PSM des moisissures n'est pas sérieux car, si le danger existe, il n'y a pas de réel risque puisque l'aérolisation est très limitée, que les apprenants ne sont pas dans les catégories à risque. De plus, les PSM ayant aussi pour fonction la culture cellulaire, il est dommage de les contaminer avec des spores d'Aspergillus.
Je répète donc qu'il nous faut, avant toute décision contraignante, analyser pour déterminer les meilleures mesures à prendre pour limiter le risque. On ne peut évidemment pas oublier la règlementation ni la situation professionnelle dans les laboratoires concernés, c'est-à-dire les LBM essentiellement, dans lesquels la règlementation n'est quasiment JAMAIS appliquée. On ne peut pas imposer un P4 pour la manipulation des microorganismes depuis la classe 2 (et pourquoi pas 1). L'absence de réflexion ne peut que conduire à des dérives regrettables soit le laxisme (en particulier dans les LBM) soit d'excès de précaution.
Enfin, on ne peut imposer que si l'on fait l'effort de répondre à des arguments par des arguments sérieux et non par un simple diktat.

Bine sûr, la manipulation des champignons, comme celle des autres agents biologiques, mérite toutes les précautions nécessaires pour éviter la contamination des élèves et de l’environnement. Les bonnes pratiques normales du laboratoire suffisent largement à cet objectif. Le risque biologique lié aux champignons est extrêmement limité tant qu’on ne manipule pas Histoplasma ou Blastomyces ! (classe 3)


PS1 : la recherche sur internet de statistiques sur les aspergillose a été vaine. Un article sur sante.gouv.fr parle de 621 cas dans 18 hopitaux parisiens en 5 ans (soit 100 cas par an) uniquement chez des patients à risque (neutropénie (y compris leucémies ?), corticothérapie long cours, greffes de moelle, aspergillose antérieures…) avec un taux de mortalité très élevé.

PS2 : pour les BTS Analyses de biologie médicale (et DUT correspondant), l’utilisation des dermatophytes est obligatoire. Les souches proviennent forcément de laboratoires et sont pathogènes… Mesurons le taux de teignes et autres épidermophyties pour évaluer le risque !


Que voyez-vous sur ce Gram réalisé sur une colonie isolée d'une selle…

Surprise d'une élève de terminale l'année dernière !!!

 

Reste plus qu'à trouver la laisse.


 

 

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Galerie API20 E, quelques couleurs…

ADH, LDC, ODC, CIT ; de l'importance de la vaseline

Lors d'une situation d'évaluation de CCF, une étudiante a commis une erreur d'ensemencement de sa galerie API20E. Elle inversa la vaseline entre encadré et souligné… S'apercevant de son erreur, elle ensemença une nouvelle galerie…

Voici l'image comparée des deux galeries : 

Remarquons que tous les tubes normalement vaselinés sont alcalins (rouges) et que le citrate (de Simmons) est vert alors que
dans la deuxième galerie, les couleurs sont différentes (avec une petite ambiguïté sur ADH par remplissage un peu trop important de la cupule).

C'est l'utilisation des peptones (peptone de levure peut être) qui cause l'alcalinisation au lieu de la décarboxylation de l'acide aminé. Pour que celle-ci soit visible, il faut absolument que le CO2 soit conservé dans la cupule et que l'utilisation des peptones soit anaérobie (fermentation) : alors le CO2 maintient l'acidification de départ alors que la fermentation des peptones n'agit pas sur le pH (l'ammoniac produit est neutralisé par les acides de fermentation). Mais, si la souche dispose d'une décarboxylase (ou une ADH), alors l'alcalinisation pourra se développer.

La même interprétation peut être faite pour Citrate de Simmons : il faut absolument que le CO2 produit s'échappe pour que l'alcalinisation apparaisse : elle est nette dans la partie ouverte du tube…

La souche est Klebsiella oxytoca (le réactif de Kovacs n'est pas encore mis).


Ure chez une bactérie Uréase - (Enterobacter cloacae)

 

 On remarquera une coloration jaune en bas et rouge en haut…

Manifestement, la quantité de vaseline fut insuffisante pour ce tube : l'alcalinisation superficielle est probablement liée au départ du CO2… (ce que l'on n'observe pas en milieu Urée Tryptophane (Indole) classique.

 


H2S chez Citrobacter freundii

 

Curieusement, une de nos souches de Citrobacter freundii donne le résultat ci-contre : le précipité de sulfure de fer III n'apparait pas de façon massive comme avec d'autres souches H2S +.

D'ailleurs nos différentes souches de  Citrobacter freundii appparaissent H2S - en Kligler la plus souvent.

 


Une surprise…

Encore une chose étonnante !

Essayez de faire cela…

 

solution au prochain numéro

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